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Universität für
Bodenkultur Wien

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Systematische Genetik und Genexpression


Gebiet


Wirkungsweise von Pilztoxinen, Umweltstress, Chemogenomische Analyse, Stressinduzierte Genexpression, Anpassung von Stresspathways

Leiter: Priv.-Doz. Dr. Christoph Schüller

 


Ausrichtung


Umgebungsparameter werden von Zellen ständig wahrgenommen. Wir arbeiten an bestimmten Aspekten der zellulären Stressantwort und verwenden Saccharomycotina wie zum Besipiel die Bäckerhefe Saccharomyces cerevisiae als Modellsystem.

Zellen passen ihr Genexpressionsprogramm den jeweiligen Umgebungsparametern wie auch internen Signalen an.



Figur 1
Hefe mit GFP

 

Ändern sich externe physikalische Parameter wie zu Beispiel die Salzkonzentration so führt dies zu osmotischen Stress und der sofortigen Aktivierung von Signalwegen. Die Konsequenz ist Veränderungen von Enzymaktivitäten und auch in großem Maßstab zu Veränderungen im Transkriptions-Programm. Sensoren, Signalwege, bestimmte Transkriptionsfaktoren, Chromatin und viele andere Faktoren tragen zu diesen Anpassungen bei. Wir konzentrieren uns auf das Zusammenspiel der verschiedenen Komponenten auf der Chromatin-Ebene.

 

 

 



Figur 2 Osmotischer Stress

 

 

Interner zellulärer Stress stammt aus Fehlfunktionen wichtiger Komponenten. Toxine verursachen eine solche Wirkung. Wir interessieren uns für die kompensatorische Reaktion von Zellen auf Pilzgifte der Trichothecene-Klasse. Die Kontamination von wichtigen Agrarprodukten wie Weizen, Gerste oder Mais mit dem Trichothecene Mykotoxin Deoxynivalenol (DON) aufgrund einer Infektion mit Fusarium-Arten, insbesondere F. graminearum, ist ein weltweites Problem. DON wird bei der Infektion der Wirtspflanze im Gewebe hergestellt und ist ein wichtiger Virulenzfaktor für F. graminearum. Mutanten mit Defekten in Toxinproduktion haben reduzierte Infektiosität. Wir sind an den Effekten auf die zelluläre Homoestase interessiert. Die Methodik, um diese Fragen zu beantworten nutzt Hefe als hoch entwickeltes genetische Modellsystem.

 

 

 


Projekte


 

Fungal Toxin action on a simple cell. Chemogenomic analysis of DON

 

 

The cellular consequences of the actions of trichothecene toxins on eukaryotic cells are not yet fully understood. One major effect of trichothecenes is inhibition of protein synthesis. Genetic and other evidence suggests a large number of successive effects on cells. Preliminary data show that the protein kinase A pathway and the ubiquitin proteolysis pathway are involved in DON resistance, however, the detailed response is unexplored. Understanding of the various cellular responses is the basis for intervention to improve resistance.

 

 

 

 

We approach the mode of action of trichothecenes by a combination of chemogenomic analysis and transcript profiling methods. Pooling data from of both assays will highlight the most important processes affected by the toxin. Saccharomyces cerevisiae is currently the only eukaryote easily amendable to such analysis strategies. 

Figur 3 Chemogenomic profiling uses arrayed yeast mutant collections

 

 

Environmental stress induced transcription: Chromatin versus transcription

 

 

Our goal is to understand how cells adjust gene expression of stress genes - using yeast as a model system. Transcription of stress genes is changing chromatin structure and vice versa.

 

Which activities are involved in maintenance and adjustment of chromatin and adjusting of the canonical structure?

In yeast, the SWI/SNF-type chromatin remodelling complex INO80 is required globally for timely repression of stress-induced genes. Our data suggest that INO80 in cooperation with other factors restores nucleosome structure at stress loci. (Klopf et al., 2009 MCB, Niederacher, Klopf, Schüller 2011).  

 

How is the chromatin structure of promoters and open reading frames contributing to proper gene regulation?

We approach this now by detailed investigation of the chromatin structure of stress genes and identification of the involved factors and their interactions.

 

 



Figur 4 Osmotic stress response in yeast. 

Reporter proteins such as Msn2 fused to GFP demonstrates the rapid response of simple yeast cells to the change of environmental condition such as osmotic stress in this case. 

Figur 5 Confrontation of a Macrophage with the C. glabrata cells. The green fluorescence is due to expression of a catalase-GFP fusion protein and demonstrates the accumulation of peroxisomes and other metabolic adjustments (Roetzer Cell. Microb. 2009)


 

 

 

Stress signalling in a human pathogenic yeast

How is signalling of environmental cues wired in the human fungal pathogen Candida glabrata? This yeast is closely related to S. cerevisiae. The contact with the host provides a number of different and stressful environments for the pathogen. Since obvious „virulence“ genes are lacking, the clue to pathogenicity might be in specially tuned gene regulation. 

We found that Candida glabrata has shifted its metabolic and environmental responses to host environments.  (Roetzer Cell. Microb. 2009, Roetzer Febs Lett. 2011).  We further investigate stress and starvation responses such as autophagy and their contribution to virulence. 

laufende Projekte

abgeschlossene Projekte

 


Publikationen


 


ausgewählte Publikationen


 

Klopf E, Paskova L, Solé C, Mas G, Petryshyn A, Posas F, Wintersberger U, Ammerer G, Schüller C. Cooperation between the INO80 complex and histone chaperones determines adaptation of stress gene transcription in the yeast Saccharomyces cerevisiae. Mol Cell Biol. 2009 Sep;29(18):4994-5007. Epub 2009 Jul 20. PubMed PMID: 19620280; PubMed Central PMCID: PMC2738301.

Roetzer A, Gratz N, Kovarik P, Schüller C. Autophagy supports Candida glabrata survival during phagocytosis. Cell Microbiol. 2010 Feb;12(2):199-216. Epub 2009 Oct 6. PubMed PMID: 19811500; PubMed Central PMCID: PMC2816358.

Batova M, Klobucnikova V, Oblasova Z, Gregan J, Zahradnik P, Hapala I, Subik J, Schüller C. Chemogenomic and transcriptome analysis identifies mode of action of the chemosensitizing agent CTBT (7-chlorotetrazolo[5,1-c]benzo[1,2,4]triazine). BMC Genomics. 2010 Mar 4;11:153. PubMed PMID: 20202201; PubMed Central PMCID: PMC2841119. 

Roetzer A, Gabaldón T, Schüller C. From Saccharomyces cerevisiae to Candida glabratain a few easy steps: important adaptations for an opportunistic pathogen. FEMS Microbiol Lett. 2011 Jan;314(1):1-9. doi: 10.1111/j.1574-6968.2010.02102.x. Epub 2010 Sep 16. Review. PubMed PMID: 20846362; PubMed Central PMCID: PMC3015064.

Roetzer A, Klopf E, Gratz N, Marcet-Houben M, Hiller E, Rupp S, Gabaldón T, Kovarik P, Schüller C. Regulation of Candida glabrata oxidative stress resistance is adapted to host environment. FEBS Lett. 2011 Jan 21;585(2):319-27. Epub 2010Dec 13. PubMed PMID: 21156173; PubMed Central PMCID: PMC3022126.

 

Hosiner D, Sponder G, Graschopf A, Reipert S, Schweyen RJ, Schüller C, Aleschko M. Pun1p is a metal ion-inducible, calcineurin/Crz1p-regulated plasma membrane protein required for cell wall integrity. Biochim Biophys Acta. 2011 Apr;1808(4):1108-19. Epub 2011 Jan 9. PubMed PMID: 21223946; PubMed Central PMCID: PMC3062784.

Niederacher G, Klopf E, Schüller C. Interplay of dynamic transcription and chromatin remodeling: lessons from yeast. Int J Mol Sci. 2011;12(8):4758-69. Epub 2011 Jul 25. PubMed PMID: 21954323; PubMed Central PMCID: PMC3179130.

 

alle Publikationen

 


Förderungsorganisationen


Fonds zur Förderung der Wissenschaftlichen Forschung

Fonds zur Förderung der Wissenschaftlichen Forschung (Austrian Science Funds)

Herzfeldersche Familienstiftung


Kooperationen


Gerhard Adam (DAGZ, BOKU)

Gustav Ammerer (MFPL, Univ. of Vienna)

Pavel Kovarik (MFPL, Univ. of Vienna)

Ken Haynes (Univ. of Exeter, UK)

 

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